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实验三、植物组织中可溶性蛋白质含量的测定
2025-10-02 18:46:57 责编:小OO
文档
植物组织中可溶性蛋白质含量的测定--考马斯亮蓝 G – 250 染色法

一、原理 

考马斯亮蓝 G – 250 ( Coomassie brilliant blue , G-250 )法是利用蛋白质 – 染料结合的原理,定量地测定微量蛋白质浓度的快速、灵敏的方法。 

考马斯亮蓝 G-250 存在着两种不同的颜色形式,红色和蓝色。它和蛋白质通过范德瓦尔键结合,在一定蛋白质浓度范围内,蛋白质和染料结合符合比尔定律。此染料与蛋白质结合后颜色由红色形式转变成蓝色形式,最大光吸收由 465 nm 变成 595 nm ,通过测定 595 nm 处光吸收的增加量可知与其结合蛋白质的量。 

蛋白质和染料结合是一个很快的过程,约 2 min 即可反应完全,呈现最大光吸收,并可稳定 1 h ,之后,蛋白质–染料复合物发生聚合并沉淀出来。此法灵敏度高,易于操作,干扰物质少,是一种比较好的定量法。其缺点是在蛋白质含量很高时线性偏低,且不同来源蛋白质与色素结合状况有一定差异。 

二、实验材料、试剂与仪器设备 

(一)实验材料 

植物材料。 

(二)试剂 

1. 标准蛋白质溶液( 100 μg / mL 牛血清白蛋白):称取牛血清蛋白 25 mg ,加水溶解并定容至 100 mL ,吸取上述溶液 40 mL ,用蒸馏水稀释至 100 mL 即可。 

2. 考马斯亮蓝试剂:称取 100 mg 考马斯亮蓝 G-250 ,溶于 50 mL 90 %乙醇中,加入 100 mL 85 %( W / V )的磷酸,再用蒸馏水定容到 1000 mL ,贮于棕色瓶中。常温下可保存一个月。 

(三)仪器设备 

分光光度计,离心机,研钵,烧杯,量瓶,移液管,试管等。 

三、实验步骤 

1. 标准曲线的绘制 

取 6 支试管,按下表加入试剂,摇匀,向各管中加入 5 mL 考马斯亮蓝试剂,摇匀,并放置 5 min 左右,以 0 号试管为空白对照,在 595 nm 下比色测定吸光度。以蛋白质含量为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。 

2. 样品测定 

( 1 ) 样品提取 称取鲜样 0.25 ~ 0.5 g ,用 5 mL 蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后, 3000 r/min 离心 10 min ,上清液备用。 

( 2 )吸取样品提取液 1.0 mL (视蛋白质含量适当稀释),放入试管中(每个样品重复 3次),加入 5 mL 考马斯亮蓝试剂,摇匀,放置 2 min 后在 595 nm 下比色,测定吸光度,并通过标准曲线查得蛋白质含量。 

绘制标准曲线的各试剂加入量

试 剂 

管 号 

标准蛋白质( mL ) 

0.20 0.40 0.60 0.80 1.00 
蒸馏水量( mL ) 

1.00 0.80 0.60 0.40 0.20 
考马斯亮蓝G-250( mL )

5.00

5.00

5.00

5.00

5.00

5.00

蛋白质含量( μg ) 

20 40 60 80 100 
  

四、结果计算 

  

蛋白质单位(mg/g.FW)

式中: C ——查标准曲线值μg 。 

V T ——提取液总体积mL 。 

W F ——样品鲜重g 。 

V S ——测定时加样量mL 。 下载本文

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