1 概述:
本本法是用于建立微生物检查法时,根据中国药典2005年版二部分要求,需对细菌、霉菌及酵母菌的计数方法进行验证。故计划于2006年9月份对细菌、霉菌及酵母菌的计数方法进行验证。
2 原理:
根据不同的样品,制备成供试液,再将规定量的供试液通过膜微过滤系统真空抽滤,将滤膜进行培养,对形成的菌落计数,或通过采用平皿法对形成的菌落计数,从而了解供试品的微生物含量。
3 菌种:
大肠埃希菌 [CMCC(B)44102]
金黄色葡萄球菌 [CMCC(B)26003]
枯草芽孢杆菌 [CMCC(B)65301]
白色念珠菌 [CMCC(B)98001]
黑曲霉 [CMCC(B)98003]
4 培养基:
营养琼脂培养基
改良马丁琼脂培养基
5 试剂:
pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液
0.9%无菌氯化钠溶液
6 设备:
MILLPORE 微膜过滤系统
7 检测方法:
7.1菌液制备
接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌新鲜培养物至营养琼脂培养基中培养37℃培养18-24小时,用0.9%无菌氯化钠溶液将培养物制备成菌悬液,用细菌比浊管比浊,其浊度与标准比浊管相当后,经梯度10倍稀释至10-5-10-7,约为50-100CFU/ml,供活菌计数及验证试验用。
接种白色念珠菌新鲜培养物至改良马丁琼脂培养基中25-28℃培养18-24小时,用0.9%无菌氯化钠溶液将培养物制备成菌悬液,用细菌比浊管比浊,其浊度与标准比浊管相当后,经梯度10倍稀释至10-5-10-6,约为50-100CFU/ml,供活菌计数及验证试验用。
接种黑曲霉孢子液至改良马丁琼脂培养基中,经25℃培养5-7天,加入3-5ml0.9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱,吸取孢子悬液,用细菌比浊管比浊,其浊度与标准比浊管相当后,经梯度10倍稀释至10-4,约为50-100CFU/ml,供活菌计数及验证试验用。
7.2活菌计数
分别取上述大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌10-5-10-7稀释液各1ml加入平皿,再用不超过45℃的营养琼脂培养基20ml注皿,每个菌株各测定2皿,30-35℃培养48小时,计算菌落数。
分别取上述白色念珠菌10-5-10-6稀释液、黑曲霉10-4稀释液各1ml加入平皿,再用不超过45℃的琥珀红琼脂培养基20ml注皿,每个菌株各测定2皿,23-25℃培养逐日观察计数。
7.3供试液的制备
取供试品10ml加入到pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液90ml中,混匀后即为1:10供试液。取上述1:10供试液,加入到pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液90ml中,混匀,作为1:100供试液。
7.4回收率的测定
薄膜过滤法:
7.4.1.试验组:取适量无菌注射用水注入开放式滤杯中以湿润滤膜,后取1:100供试液100ml、50-100cfu试验菌同时加入滤杯中,抽滤,后将滤膜夹入到适宜试验菌培养的培养基平皿中,共制备两张滤膜,置规定温度培养规定时间,逐日观察结果。
7.4.2.菌液组:取适量无菌注射用水注入开放式滤杯中以湿润滤膜,后取灭菌pH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液100ml、50-100cfu试验菌同时加入滤杯中,抽滤,后将滤膜夹入到适宜试验菌培养的培养基平皿中,共制备两张滤膜,置规定温度培养规定时间,逐日观察结果。
7.4.3.供试品对照组:取适量无菌注射用水注入开放式滤杯中以湿润滤膜,后取1:100供试液100ml加入滤杯中,抽滤,后将滤膜夹入到适宜试验菌培养的培养基平皿中,共制备两张滤膜,置规定温度培养规定时间,逐日观察结果。
8 验证内容、方法及限度:
8.1 设备确认
8.1.1 检查验证所使用的设备的检定状,并按下列方式记录检查结果。
| 设备名称及型号 | 产地 | 检定结论 | 备注 |
| MILLPORE 微膜过滤系统 | 美国 |
| 文件名称 | 存放处 |
| 微生物限度(细菌、霉菌、酵母菌含量)测定标准操作细则 | |
| 三联式Microfil过滤系统使用标准操作细则 | |
| 中华人民共和国药典2005年版二部 |
按如下公式计算试验组的加菌回收率:
试验组的平均菌落数—供试品对照组的平均菌落数
试验组的加菌回收率= ×100%
菌液组的平均菌落数
8.2试验限度
经过三次的平行试验该供试品接种5株阳性试验菌株,实施薄膜过滤法检查的加菌回收率均不低于70%
9 验证参加人员
| 部 门 | 姓 名 | 职 称 | 备 注 |
本验证方案报质量保证部门复核并审核。下载本文